Study of protein profile and immunochemical reactivity for extracts of D. farinae, D. pteronyssinus and B. tropicalis mites in the city of Rio de Janeiro, Brazil
Estudo do perfil proteico e reatividade imunoquímica dos extratos dos ácaros D. farinae, D. pteronyssinus e B. tropicalis na cidade do Rio de Janeiro, Brasil
Francisca das Chagas Sobral Silva Mihos; Patrícia Ribeiro Pereira; Anderson Bruno de Almeida Matos; Caio Velloso Mergh; Maria Queiroz da Cruz
Abstract
Objective: In tropical countries like Brazil, the mapping of protein constituents of mite extracts becomes relevant in the context of therapeutic evaluations of respiratory allergic diseases. In addition, this allows to set up an internal national database of the population’s sensitization profile. Extracts are complex mixtures containing different proportions of biological materials, and the determination of their protein profile is necessary for an improved performance in diagnosis and therapy. Therefore, in this study, we used electrophoresis to characterize the protein constituents of B. tropicalis, D. farinae and D. pteronyssinus extracts, and evaluated the reactivity of specific immunoglobulins from atopic volunteers from the city of Rio de Janeiro, Brazil. Methods: Samples of the extracts were subjected to precipitation with acetone and applied to polyacrylamide gel 12.5%. After the electrophoretic run, samples were transferred to a 0.45 μm nitrocellulose membrane, followed by incubation with the serum pool. Bands related to antigenantibody reactivity were obtained by the colorimetric method, using peroxidase conjugated to secondary antibody. Results: The results obtained showed that protein precipitation favored the visualization of bands in the polyacrylamide gel; homogeneity was evidenced by experiment reproducibility and low standard deviation values. With regard to electrophoretic profile, the extracts showed specific proteins in their composition, with positive reactivity to the immunochemical test. Conclusion: One may infer that mite extracts in Brazil present different allergens when compared to extracts described in the American and European literature, warranting the development of new, specific criteria for extract standardization.
Keywords
Resumo
Objetivo: Em países tropicais, como o Brasil, o mapeamento dos constituintes proteicos de extratos de ácaros torna-se informação relevante quando se pretende fazer avaliações terapêuticas de doenças alérgicas respiratórias, além de contribuir para a construção de um banco de dados interno do país. Os extratos apresentam-se como misturas complexas contendo diferentes composições de material biológico, sendo necessária a determinação do seu perfil proteico para um melhor desempenho em diagnóstico e terapia. Assim, este estudo analisou a eletroforese das proteínas constituintes dos extratos de B. tropicalis, D. farinae e D. pteronyssinus e avaliou a reatividade das imunoglobulinas específicas de soros de voluntários atópicos da cidade do Rio de Janeiro, Brasil. Métodos: Amostras dos extratos foram submetidas a precipitação com acetona e aplicadas em gel de poliacrilamida 12,5%. Após a corrida eletroforética, as amostras foram transferidas para membrana de nitrocelulose de 0,45 µm, seguido da etapa de incubação com pool de soros. As bandas referentes à reatividade antígeno-anticorpo foram obtidas pelo método colorimétrico, utilizando-se a peroxidase conjugada a anticorpo secundário. Resultados: Os resultados obtidos mostraram que a precipitação proteica favoreceu a visualização das bandas no gel, mostrando sua homogeneidade pela reprodutibilidade dos experimentos e seu baixo desvio padrão. Também quanto ao perfil eletroforético, os extratos apresentaram proteínas específicas em sua constituição, tendo reatividade positiva ao teste imunoquímico. Conclusão: Pode-se inferir que os extratos de ácaros obtidos no Brasil apresentam alérgenos diferentes quando comparados com extratos proteicos apresentados na literatura americana e europeia, o que torna necessária a criação de critérios próprios de avaliação para padronização dos extratos.
Palavras-chave
Referências
1. Calderón MA, Linneberg A, Kleine-Tebbe J, De Blay F, Hernandez Fernandez de Rojas D, Virchow JC, et al. Respiratory allergy caused by house dust mites: what do we really know? J Allergy Clin Immunol. 2015;136(1):38-48.
2. Naspitz CK, Solé D, Aguiar MC, Chavarria ML, Rosário Filho N, Zuliani A, Toledo EC, Barreto BA, Souza LS; Grupo PROAL. Phadiatop® in the diagnosis of respiratory allergy in children: Allergy Project – PROAL. J Pediatr (Rio. J). 2004;80(3):217-22.
3. Milián E, Díaz ANAM. Allergy to house dust mites and asthma. P R Health Sci J. 2004;23(1):47-57.
4. Fuiano N, Delvecchio M, Incorvaia C. Factors associated with different results of allergy tests in children with dust mite-induced atopic. Allergol Immunopathol (Madr). 2015;43(3):238-42.
5. Tang VH, Stewart GA, Chang BJ. House dust mites possess a polymorphic, single domain putative peptidoglycan d,l endopeptidase belonging to the NlpC/P60 Superfamily. FEBS Open Bio. 2015;5:813‑23.
6. Deb R, Shakib F, Reid K, Clark H. Major house dust mite allergens Dermatophagoides pteronyssinus 1 and Dermatophagoides farinae 1 degrade and inactivate lung surfactant proteins A and D. J Biol Chem. 2007;282(51):36808-19.
7. Cunha VES, Silva MH, Faccini JLH. Serological identification of house dust mite allergens in dogs with atopic dermatitis. Pesq Vet Bras. 2012;32(9):917-21.
8. Pauli G, Bessot J. Les acariens: biologie, écologie et actualités des allergènes moléculaires. Rev Fr Allergol. 2013;53:45-58.
9. Thomas WR, Smith W, Hales J, Mills KL, Brien MO. Characterization and immunobiology of house dust mite allergens. Allergy Immunol. 2002;6872:1-18.
10. Herman J, Thelen N, Smargiasso N, et al. Der p 1 is the primary activator of Der p 3, Der p 6 and Der p 9 the proteolytic allergens produced by the house dust mite Dermatophagoides pteronyssinus. Biochim Biophys Acta. 2014;1840:1117-24.
11. Fonseca LF, Ana Maria Díaz. Blomia reatividade cruzada. Puerto Rico Health Sci J. 2003;22:353-7.
12. Chuab LC, Mercado D, Jiménez S, Yan LMLPK, A. Analysis of the cross-reactivity between BtM and Der p 5 , two group 5 recombinant allergens from Blomia tropicalis and Dermatophagoides pteronyssinus. Int Arch Allergy Immunol. 1998;117:38‑45.
13. Arruda LK, Fernandez-Caldas E, Naspitz CK, Montealegre F, Vailes LD, Chapman MD. Identification of Blomia tropicalis allergen Blo t 5 by cDNA cloning. Int Arch Allergy Immunol. 1995;107:456-7.
14. Caraballo L, Puerta L, Martínez B, Moreno L. Identification of allergens from the mite Blomia tropicalis. Clin Exp Allergy. 1993;24(11):1056-60.
15. Hu G, Heitmann JA, Rojas OJ, Pawlak JJ, Argyropoulos DS. Monitoring cellulase protein adsorption and recovery using SDSPAGE. Ind Eng Chem Res. 2010;49(18):8333-8.
16. De Moreno MR, Smith JF, Smith R V. Silver staining of proteins in polyacrylamide gels: Increased sensitivity through a combined Coomassie blue-silver stain procedure. Anal Biochem. 1985;151(2):466-70.
17. Gutarowska B, Kosmowska M, Wiszniewska M, Palczynski C, Walusiak-Skorupa J. An investigation of allergenic proteins produced by moulds on building materials. Indoor Built Environ. 2012;21(2):253-63.
18. Jeong KY, Choi SY, Lee JH, Lee IY, Yong TS, Lee JS, et al. Standardization of house dust mite extracts in Korea. Allergy Asthma Immunol Res. 2012 Nov;4(6):346-50.
19. Ree HI, Jeon SH, Lee IY, Hong CS, Lee DK. Fauna and geographical distribution of house dust mites in Korea. Korean J Parasitol. 1997;35(1):9-17.
20. Brunetto B, Tinghino R, Braschi MC, Antonicelli L, Pini C, Iacovacci P. Characterization and comparison of commercially available mite extracts for in vivo diagnosis. Allergy. 2010;65:184-90.
21. Colloff MJ. Dust mites. Csiro Publishing; 2009.
22. Lima AO, Silva WD. Imunologia, imunopatologia, alergia. 1ª ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan; 1970.
23. Thermo Fisher Scientific. Acetone precipitation of proteins. 0747(815):1-2.
24. Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. The folin by oliver. J Biol Chem. 1951;193:265-76.
25. Maldonade IR, Carvalho PGB, Ferreira NA. Protocolo para determinação de açúcares totais em hortaliças pelo método de DNS. Brasília, DF: Embrapa Hortaliças, 2013. 4 p. (Embrapa Hortaliças. Comunicado Técnico, 85).
26. Ornstein L, Davis BJ. Disco eletroforese-I: antecedentes e teoria. Ann NY Acad Sci. 1964;121:321-49.
27. Taketomi EA, Silva DA, Cunha Jr JP, Pereira EA, Sopelete MC, Espíndola FS, et al. Perfil imunoquímico das vacinas comerciais de D. pteronyssinus para imunoterapia. Rev bras alerg imunopatol. 2001;24(5):173-82.
28. Moreira CGA. Produção de alérgeno Blo t 5 recombinante (rBlot t 5) de Blomia tropicalis e reatividade de anticorpos IgE a alérgenos Blo t 5 nativo e recombinante em pacientes atópicos [dissertação de mestrado]. Uberlândia (MG): Universidade Federal de Uberlândia; 2010.
29. Ramos JD, Cheong N, Lee BW, Chua KY. cDNA cloning and expression of Blo t 11, the Blomia tropicalis allergen homologous to paramyosin. Int Arch Allergy Immunol. 2001;126(4):286-93.
30. Santos AB, Chapman MD, Aalberse RC, Vailes LD, Ferriani VP, Oliver C, et al. Cockroach allergens and asthma in Brazil : Identification of tropomyosin as a major allergen with potential cross- reactivity with mite and shrimp allergens. J Allergy Clin Immunol. 1999;104:329‑37.
Submetido em:
20/03/2017
Aceito em:
28/06/2017
